二氯甲烷降解菌的分离鉴定、降解特性及关键酶基因克隆与表达研究
二氯甲烷降解菌的分离鉴定、降解特性及关键酶基因克隆与表达研究【摘要】:本文通过选择性富集培养,从长期被卤代脂肪烃污染的废水和活性污泥中分离纯化二氯甲烷高效降解菌,并对所分离菌株进行
【学位授予单位】:浙江工业大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2009
【分类号】:Q93
【目录】:
- 中文摘要9-12
- 英文摘要12-17
- 第一章 绪论17-58
- 1.1 二氯甲烷的分布和对环境的影响17-28
- 1.1.1 卤代烃与二氯甲烷17-21
- 1.1.2 二氯甲烷在环境中的累积21-26
- 1.1.3 二氯甲烷的危害26-28
- 1.2 微生物的脱氯机制28-35
- 1.2.1 有机卤化物作为碳源和能量的唯一来源29-30
- 1.2.2 微生物对有机氯化物脱氯方式举例30-35
- 1.3 二氯甲烷生物降解菌35-38
- 1.3.1 氯代脂肪烃降解菌35-36
- 1.3.2 二氯甲烷降解菌36-38
- 1.4 二氯甲烷脱卤素酶38-45
- 1.4.1 脱卤酶的生化和分子特征38-40
- 1.4.2 二氯甲烷脱卤素酶的一般性质40-42
- 1.4.3 二氯甲烷脱卤素酶核甘酸序列和二级结构42-43
- 1.4.4 二氯甲烷脱卤素酶的三维结构43-45
- 1.5 二氯甲烷生物降解关键酶的分子生物学研究45-46
- 1.6 二氯甲烷脱卤素酶和GSH-S-转移酶的进化关系46-48
- 1.7 二氯甲烷脱卤素酶基因表达的调控48-50
- 1.8 二氯甲烷的生物净化原理与工艺50-55
- 1.8.1 生物法净化二氯甲烷机理50-51
- 1.8.2 生物法净化二氯甲烷工艺51-55
- 1.9 本研究的工作基础、目的、意义和主要内容55-58
- 1.9.1 本研究的工作基础55
- 1.9.2 本研究的目的和选题意义55-56
- 1.9.3 本研究的主要内容56-58
- 第二章 二氯甲烷降解菌株分离、鉴定及系统发育研究58-87
- 2.1 材料与方法58-69
- 2.1.1 材料与培养基58-59
- 2.1.2 试剂和仪器59
- 2.1.3 检测方法59-60
- 2.1.4 二氯甲烷降解菌株分离与降解能力初筛60-61
- 2.1.5 降解菌株的鉴定及系统发育研究61-69
- 2.2 结果与讨论69-84
- 2.2.1 菌株的驯化与筛选69-71
- 2.2.2 分离菌株的降解能力71-72
- 2.2.3 分离菌株的鉴定结果72-77
- 2.2.4 分离菌株的16S rDNA序列分析77-83
- 2.2.5 基于16S rDNA序列系统发育树的构建83-84
- 2.3 小结84-87
- 第三章 二氯甲烷降解菌株生长和降解特性研究87-105
- 3.1 材料与方法87-92
- 3.1.1 二氯甲烷降解菌株生长条件研究87-88
- 3.1.2 分离菌株降解特性研究88-89
- 3.1.3 高盐浓度下菌株WZ-12降解二氯甲烷特性89-90
- 3.1.4 二氯甲烷降解率的测定90
- 3.1.5 菌株wh22降解性质粒特性研究90-92
- 3.2 结果与讨论92-104
- 3.2.1 二氯甲烷降解菌的生长条件92-94
- 3.2.2 分离菌株降解特性研究94-98
- 3.2.3 高盐浓度下菌株WZ-12降解二氯甲烷特性98-100
- 3.2.4 菌株wh22降解性质粒特性研究100-104
- 3.3 小结104-105
- 第四章 二氯甲烷生物降解工艺条件的优化105-117
- 4.1 材料与方法105-108
- 4.1.1 菌株和培养基105-106
- 4.1.2 最佳降解条件的选择106
- 4.1.3 摇瓶水平生物降解试验106
- 4.1.4 二氯甲烷的测定106-107
- 4.1.5 试验设计与分析107-108
- 4.2 结果与讨论108-115
- 4.2.1 最佳降解条件108-109
- 4.2.2 试验设计109
- 4.2.3 摇瓶生物降解试验109-111
- 4.2.4 响应面法优化DCM好氧降解工艺111-115
- 4.2.5 对降解率回归模型的实验验证115
- 4.3 小结115-117
- 第五章 二氯甲烷脱卤酶的分离纯化及酶学性质研究117-133
- 5.1 材料与方法117-121
- 5.1.1 主要仪器与试剂117-118
- 5.1.2 菌种及培养条件118
- 5.1.3 实验方法118-120
- 5.1.4 酶学性质120-121
- 5.2 结果与讨论121-131
- 5.2.1 酶的分离纯化121-126
- 5.2.2 产酶和酶学性质研究126-131
- 5.3 小结131-133
- 第六章 二氯甲烷脱卤酶的基因克隆与鉴定133-158
- 6.1 材料与方法133-144
- 6.1.1 菌株、载体和试剂盒133-135
- 6.1.2 试剂和培养基135-136
- 6.1.3 引物设计136-137
- 6.1.4 仪器与DNA分析软件137
- 6.1.5 试验设计与方法137-142
- 6.1.6 序列测定与系统发育分析142-143
- 6.1.7 同位素标记探针制备143
- 6.1.8 Southern分子杂交143-144
- 6.2 结果与讨论144-156
- 6.2.1 提取的细菌基因组的浓度144-145
- 6.2.2 PCR扩增dcmR基因145
- 6.2.3 克隆载体pUC57构建与鉴定145-146
- 6.2.4 表达载体的构建与酶切鉴定146-147
- 6.2.5 目的基因的鉴定147-156
- 6.3 小结156-158
- 第七章 二氯甲烷脱卤素酶基因在大肠杆菌中的表达158-178
- 7.1 材料与方法158-168
- 7.1.1 菌株、载体和工具酶158-160
- 7.1.2 试剂和培养基160
- 7.1.3 引物分析设计160-161
- 7.1.4 目的基因片断的PCR扩增与克隆161-162
- 7.1.5 表达质粒的构建与转化162-167
- 7.1.6 目的基因dcmR在大肠杆菌中诱导表达167
- 7.1.7 重组蛋白的聚丙烯酰胺凝胶(SDS-PAGE)电泳167
- 7.1.8 表达产物的活性分析167-168
- 7.2 结果与讨论168-177
- 7.2.1 重组表达载体的阳性克隆检测168-170
- 7.2.2 重组表达载体的酶切鉴定结果170-172
- 7.2.3 dcmR基因在大肠杆菌中的高效表达172-176
- 7.2.4 表达产物二氯甲烷脱卤素酶酶活检测176-177
- 7.3 小结177-178
- 第八章 重组菌及其二氯甲烷脱卤素酶的研究178-189
- 8.1 材料与方法178-180
- 8.1.1 菌株、载体和工具酶178
- 8.1.2 试剂和培养基178
- 8.1.3 重组子诱导表达条件优化178-179
- 8.1.4 二氯甲烷降解率的测定179
- 8.1.5 脱卤素酶的活力测定179
- 8.1.6 融合蛋白的纯化和坚定179-180
- 8.1.7 融合蛋白的聚丙烯酰胺凝胶(SDS-PAGE)电泳180
- 8.1.8 重组酶的酶学性质180
- 8.2 结果与讨论180-187
- 8.2.1 重组菌株和宿主菌E.coli BL21(DE3)的生长特性比较180-181
- 8.2.2 重组菌株和B.circulans WZ-12对CH_2Cl_2降解特性的比较181-182
- 8.2.3 表达初检验182-183
- 8.2.4 诱导表达与电泳检测183-184
- 8.2.5 重组酶的性质184-187
- 8.3 小结187-189
- 第九章 结论与展望189-193
- 9.1 本论文主要结论189-191
- 9.2 论文创新点191-192
- 9.3 本文工作的不足及对今后工作的展望192-193
- 博士研究生学习期间发表的主要学术论文193-194
- 致谢194-195
- 参考文献195-207
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