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平菇发酵甜高粱秸秆工艺及平菇多糖抗氧化性能的研究

来源:论文学术网
时间:2024-08-18 22:04:18
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平菇发酵甜高粱秸秆工艺及平菇多糖抗氧化性能的研究【摘要】:从15种平菇菌种P-1、P-2、P-3、P-4、P-5、P-5、P-6、P-7、P-8、P-9、P-10、P-11、P-1

【摘要】:从15种平菇菌种P-1、P-2、P-3、P-4、P-5、P-5、P-6、P-7、P-8、P-9、P-10、P-11、P-12、P-13、P-14、P-15中筛选在甜高粱秸秆粉上生长速度快、盛产平菇多糖及对粗纤维降解能力强的菌株;对平菇液体菌种最佳培养基条件、固态发酵最佳培养基及发酵条件进行研究。对发酵后的甜高粱秸秆粉中的平菇多糖进行水浴法浸提,然后进行抑菌、抗氧化性和还原能力进行测定。结果表明:P-6是最适宜于发酵甜高粱秸秆粉的菌种。液体种子摇瓶培养基的最佳配方为:豆饼粉10-15g/L、甜高粱秸秆粉2g/L、玉米粉25g/L、麸皮粉25g/L,采用此培养基,在150 r/min、24-26℃条件下培养5 d,培养其液生物量可以达到20.74 mg/mL,平菇多糖达20.81 mg/mL。固态发酵最佳培养基为70%甜高粱秸秆、10%玉米粉、10%豆饼粉、10%麸皮粉,65 %水。固态发酵最佳条件为发酵温度26℃、时间7d、初始pH=5、初始含水量65%、接种量20%)和发酵层厚度2cm时最佳。在此条件下,培养液的生物量和平菇多糖可达20.74mg/mL、20.81mg/mL。平菇多糖对大肠杆菌、沙门氏菌等有很强的抑制效果。浓度为4mg/mL时对O2-·的清除率是34.3%,当浓度为8mg/mL时对O2-·的清除率高达63.9%;当浓度大于4 mg/mL时对·OH的清除率迅速上升,当浓度为10 mg/mL时对·OH的清除率最高可达76.2 %;当浓度为1-3 mg/mL时对DPPH·的清率从23.7 %上升到41.8 %,当浓度为5 mg/mL时对DPPH·的清除率为50.6 %。 【关键词】:甜高粱秸秆 平菇 饲料 抗氧化性
【学位授予单位】:新疆农业大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2010
【分类号】:S646.14
【目录】:
  • 摘要4-5
  • Abstract5-9
  • 第1章 绪论9-16
  • 1.1 世界、全国、新疆甜高粱资源及种植情况9-10
  • 1.2 甜高粱秸秆应用研究进展10-12
  • 1.2.1 开发作为饲料10-11
  • 1.2.2 开发作为肥料11
  • 1.2.3 制取淀粉11
  • 1.2.4 生产燃料11-12
  • 1.3 真菌或食用菌饲料研究进展12-13
  • 1.4 真菌多糖研究进展13-14
  • 1.4.1 抗肿瘤作用13
  • 1.4.2 抗氧化作用13
  • 1.4.3 免疫促进作用13
  • 1.4.4 抗突变作用13-14
  • 1.4.5 降低胆固醇作用14
  • 1.5 甜高粱秸秆生产饲料的限制因素14-15
  • 1.5.1 粗纤维含量14
  • 1.5.2 粗蛋白质含量14
  • 1.5.3 维生素含量14-15
  • 1.6 甜高粱秸秆生产蛋白饲料的开发意义15
  • 1.6.1 甜高粱秸秆生产的蛋白饲料是绿色饲料15
  • 1.6.2 对农业资源综合利用价值重大15
  • 1.7 研究的目的和意义15
  • 1.8 研究内容15-16
  • 第2章 菌种的筛选16-26
  • 2.1 前言16
  • 2.2 材料与试剂16-18
  • 2.2.1 菌种16
  • 2.2.2 培养基16
  • 2.2.3 试验试剂16-17
  • 2.2.4 试验相关溶液17
  • 2.2.5 试验仪器17-18
  • 2.3 测定方法18-21
  • 2.3.1 平菇多糖的检测:硫酸-苯酚显色法18-20
  • 2.3.2 粗蛋白质的测定20-21
  • 2.3.3 粗纤维的测定21
  • 2.4 试验方法21-22
  • 2.4.1 在PDA 斜面上菌种筛选试验21
  • 2.4.2 在甜高粱秸秆粉PDA 斜面上菌种筛选试验21-22
  • 2.4.3 固态发酵菌种筛选试验22
  • 2.5 结果与分析22-24
  • 2.5.1 在PDA 斜面上的菌株筛选结果22
  • 2.5.2 甜高粱秸秆粉PDA 斜面上菌株筛选结果22-23
  • 2.5.3 固态发酵菌种筛选试验结果23-24
  • 2.6 结论24-26
  • 第3章 液体菌种培养基优化26-35
  • 3.1 引言26
  • 3.2 材料及仪器26-27
  • 3.2.1 菌种26
  • 3.2.2 试验试剂26
  • 3.2.3 主要仪器26-27
  • 3.3 测定方法27
  • 3.3.1 生物量的测定27
  • 3.3.2 平菇多糖的测定27
  • 3.4 培养基组分试验27
  • 3.4.1 菌种的制备27
  • 3.4.2 甜高粱秸秆粉培养基试验27
  • 3.4.3 甜高粱秸秆粉和麸皮粉培养基试验27
  • 3.4.4 甜高粱秸秆、麸皮粉和玉米粉培养基试验27
  • 3.4.5 甜高粱秸秆粉、麸皮粉、玉米粉和豆饼粉培养基试验27
  • 3.5 培养基成分最佳用量试验27-28
  • 3.5.1 玉米粉用量的影响27
  • 3.5.2 麸皮粉用量的影响27-28
  • 3.5.3 豆饼粉用量的影响28
  • 3.5.4 甜甜高粱秸秆粉用量的影响28
  • 3.5.5 正交试验28
  • 3.6 结果与分析28-33
  • 3.6.1 培养基组分试验结果28-29
  • 3.6.2 玉米粉用量的影响29
  • 3.6.3 麸皮粉用量的影响29-30
  • 3.6.4 豆饼粉用量的影响30-31
  • 3.6.5 正交试验优化培养基的组成31-33
  • 3.7 讨论33-34
  • 3.8 结论34-35
  • 第4章 均匀试验设计优化固体发酵培养基35-44
  • 4.1 引言35
  • 4.2 材料35
  • 4.2.1 菌种35
  • 4.2.2 液体培养基35
  • 4.2.3 固体发酵培养基35
  • 4.2.4 液体菌种的制备35
  • 4.3 试验方法35-37
  • 4.3.1 固体发酵35
  • 4.3.2 固体发酵培养基优化试验35-36
  • 4.3.3 最佳培养条件试验36
  • 4.3.4 正交试验设计36-37
  • 4.4 试验结果与分析37-43
  • 4.4.1 固体发酵培养基优化37-38
  • 4.4.2 最佳培养条件试验38-41
  • 4.4.3 正交试验结果与分析41-43
  • 4.5 结论43-44
  • 第5章 平菇多糖抑菌及抗氧化性试验44-52
  • 5.1 材料与仪器44
  • 5.1.1 样品44
  • 5.1.2 菌种44
  • 5.1.3 培养基44
  • 5.1.4 仪器设备44
  • 5.2 试验方法44-47
  • 5.2.1 平菇多糖的提取44-45
  • 5.2.2 抑菌试验45
  • 5.2.3 平菇多糖最低抑菌浓度(MIC)的测定45
  • 5.2.4 氧化还原性试验45-47
  • 5.3 结果与分析47-50
  • 5.3.1 抑菌试验结果47
  • 5.3.2 平菇多糖的最低抑菌浓度(MIC)的测定47-48
  • 5.3.3 0~(2-)·清除率试验结果48
  • 5.3.4 ·OH 清除率试验结果48-49
  • 5.3.5 平菇多糖对 DPPH·的清除效果49-50
  • 5.3.6 多糖的还原能力试验结果50
  • 5.4 结论50-52
  • 第6章 结论52-53
  • 参考文献53-57
  • 致谢57-58
  • 作者简介58


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